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CytoSMART Lux3細胞成像儀
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技術(shù)參數(shù)
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產(chǎn)品介紹:

Axion CytoSMART Lux3箱內(nèi)全自動活細胞成像系統(tǒng)(原Lonza CytoSMART活細胞成像儀),為荷蘭進口細胞成像儀,體積小巧,可方便地用于二氧化碳培養(yǎng)箱內(nèi),在明場、熒光通道下對細胞培養(yǎng)進行監(jiān)測,并通過拍攝高品質(zhì)細胞圖像、延時攝影、快速可靠的數(shù)據(jù)處理軟件,實現(xiàn)對樣本形態(tài)及行為變化的實時可視化分析。

Axion CytoSMART Lux3箱內(nèi)全自動細胞成像系統(tǒng) 北京澤平

 

CytoSMART Lux3細胞成像儀優(yōu)勢

1、體積小巧

所有硬件和電子器件都能在5~40°C及20~95%的濕度環(huán)境下運行。更小尺寸,重量1.3kg,箱內(nèi)移動無壓力,空間占用少。

2、操作簡單

step-by-step引導(dǎo)式實驗流程設(shè)定,點擊即自動呈現(xiàn)數(shù)據(jù)、圖片或影像,照片上傳國內(nèi)云端服務(wù)器,進行圖像數(shù)據(jù)分析。即插即用,無需安裝調(diào)試,無易損模塊,無需維護。

3、高品質(zhì)圖片

LED光源位于樣本上方,數(shù)據(jù)采集由樣本臺下方的可變焦鏡頭完成,640萬像素CMOS成像,10倍鏡下0.7μm/像素的超高分辨率,只使用CMOS 67%的核心區(qū)域成像,避免畸變困擾。

4、方便拓展

可多臺并聯(lián),提升實驗通量和平臺共享能力。一拖四,單臺終端即能實現(xiàn)實驗室集約管理。

5、兼容各類細胞培養(yǎng)容器

可使用任何高度小于55mm(樣本臺到光源下沿的距離)的透明培養(yǎng)容器,如6~384孔多孔培養(yǎng)板、培養(yǎng)皿、T25~T225培養(yǎng)瓶等。

 

 

CytoSMART Lux3細胞成像儀應(yīng)用

支持明場、以及紅色和綠色熒光雙通道細胞計數(shù),可對樣本中被熒光標記細胞的數(shù)量和大小進行定量計算,并開展長期追蹤。

1、轉(zhuǎn)染與轉(zhuǎn)導(dǎo)

CytoSMART Lux3優(yōu)秀的成像能力和機器學(xué)習(xí)算法,可對熒光報告基因載體的表達進行直接觀測和定量測定。
 
Axion CytoSMART Lux3箱內(nèi)全自動細胞成像系統(tǒng),明場、熒光細胞成像儀 北京澤平

實驗樣本為HepG2細胞,使用了BacMam表達系統(tǒng)進行轉(zhuǎn)導(dǎo)。通過圖像數(shù)據(jù)自動分析,軟件給出了細胞覆蓋度和熒光標記計數(shù)的實時結(jié)果。藍色對應(yīng)整體樣本,綠色和紅色對應(yīng)其中表達了BacMam-Actin-GFP及/或BacMam-Nucleus-RFP的那部分細胞。可以看到從轉(zhuǎn)染后第7小時開始,紅色和綠色熒光蛋白的表達一直呈現(xiàn)迅速升高的趨勢,且過夜以后仍然未見衰退,雖然此時細胞的增殖已經(jīng)進入平臺期。而且轉(zhuǎn)導(dǎo)表達會先發(fā)生在細胞骨架中,那里表達的蛋白量也高于細胞核。這些數(shù)據(jù)結(jié)合影像,提供了綜合性的轉(zhuǎn)導(dǎo)質(zhì)控依據(jù)。
 
Axion CytoSMART Lux3箱內(nèi)全自動細胞成像系統(tǒng),明場、熒光細胞成像儀 北京澤平
Axion CytoSMART Lux3箱內(nèi)全自動細胞成像系統(tǒng),明場、熒光細胞成像儀 北京澤平

 

2、細胞匯合變化 

支持在2D培養(yǎng)體系中計算被細胞覆蓋的表面占比,提供高效、保真的細胞匯合度分析;趫D像的自動捕獲及計算,自動生成報告展示細胞覆蓋度(%,成像范圍內(nèi)總的細胞覆蓋度,當(dāng)使用熒光成像時,分別給出紅色及綠色熒光的覆蓋度)、匯合比例(%,發(fā)出綠色及紅色熒光物體各自的覆蓋度)數(shù)據(jù)。應(yīng)用于在無標記或熒光標記實驗中計算細胞匯合度、確定合適的細胞傳代時間點以維持細胞表型及培養(yǎng)質(zhì)量、藥物處理后細胞匯合度及活力評估、設(shè)定提醒內(nèi)容告知何時完成細胞傳代等。CytoSMART Lux3自動對細胞活力和增殖過程進行追蹤并給出定量分析,提高實驗的效率和可重復(fù)性。
 
Axion CytoSMART Lux3箱內(nèi)全自動細胞成像系統(tǒng),明場、熒光細胞成像儀 北京澤平

 

3、劃痕/遷移跟蹤

支持觀察劃痕實驗,可在實驗全程中無標記地檢測細胞的遷移,實時觀察并定量檢測傷口閉合或者是細胞侵襲的過程,以評估藥物處理及條件改變對于遷移過程中細胞的影響等。系統(tǒng)可自動選定無細胞區(qū)域(即劃痕),并定量計算該缺口閉合及細胞遷移的速度,提供劃痕面積(μm2,變化中的劃痕面積)、速度(μm2/s,細胞遷移速度)等數(shù)據(jù)。
 
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4、細胞凋亡

結(jié)合特定凋亡通路的熒光標記,Lux3可以在監(jiān)控樣本動態(tài)變化的過程中,提示凋亡事件發(fā)生的時間順序或通路依賴性。
 
Axion CytoSMART Lux3箱內(nèi)全自動細胞成像系統(tǒng),明場、熒光細胞成像儀 北京澤平

綠色熒光染料pSIVA-IANBD能結(jié)合外翻的細胞膜中磷脂酰絲氨酸(PS),從而提示早期的凋亡發(fā)生;而PI則是常用的細胞核紅色熒光染料,它能指示凋亡過程的終結(jié)。在兩組CHOK-1細胞樣本中加入上述兩種熒光染料后,并聯(lián)使用兩臺Lux3,進行了間隔為10分鐘的連續(xù)攝像并一直持續(xù)到第24小時。圖中的上層為空白對照組的延時成像結(jié)果,下層為同時間點經(jīng)0.6mM H2O2處理發(fā)生了細胞凋亡的實驗組的成像結(jié)果。通過對熒光區(qū)域的定量識別,CytoSMART云端計算能分析得到并自動生成兩個樣本各自的凋亡指數(shù)曲線,為凋亡研究提供重要的判斷依據(jù)。
 


5、單細胞示蹤

在ibidi μ-Slide channel板中觀察細胞對FBS的濃度變化是否做出趨向性運動。HeLa細胞上樣時培養(yǎng)基中FBS的濃度為10%。在相鄰的兩個Channel中則分別添加20%和0% FBS濃度的同種培養(yǎng)基,在這樣的FBS濃度梯度環(huán)境中,細胞是可以移動的。另設(shè)一塊趨化板作為對照組,其中不同部位的FBS濃度均為10%。該實驗并聯(lián)使用了兩臺Lux 3,以每5分鐘拍攝一次的頻率連續(xù)采樣24小時。隨后以圖片為原始數(shù)據(jù),使用CytoSMART單細胞識別功能及第三方軟件的追蹤功能,來對每個細胞的運動軌跡進行統(tǒng)計學(xué)分析。結(jié)果發(fā)現(xiàn),HeLa細胞在FBS濃度恒定的環(huán)境中會在更大范圍內(nèi)做均勻分散;而在具有FBS濃度差的環(huán)境中,其運動范圍則更為集中,而且存在向更高濃度區(qū)域運動的傾向。
 
Axion CytoSMART Lux3箱內(nèi)全自動細胞成像系統(tǒng),明場、熒光細胞成像儀 北京澤平

技術(shù)參數(shù):
型號 Lux3 BR Lux3 FL
名稱 箱內(nèi)明場活細胞成像儀 箱內(nèi)熒光/明場活細胞成像儀
放大倍數(shù) 10×物鏡,20×數(shù)放大
感光元件 6.4 MP CMOS
照片大小 2072像素*2072像素
明場掃描范圍 1.45mm*1.45mm
光學(xué)通道 明場 明場,紅色/綠色熒光
數(shù)據(jù)格式 JPG、TIFF、XLSX、MP4
培養(yǎng)容器尺寸 任何高度小于55mm的透明底培養(yǎng)容器
主機尺寸 166mm*140mm*135mm (L*W*H)
重量 1.3kg
運行環(huán)境 5~40℃,20-95%濕度


 

 

參考文獻

1.Migration of Myogenic Cells Is Highly Influenced by Cytoskeletal Septin7. Zsolt Ráduly, László Szabó, Beatrix Dienes, et al. Cells, 2023, 12(14), 1825, https://doi.org/10.3390/cells12141825
2. MicroRNA-375 repression of Kruppel-like factor 5 improves angiogenesis in diabetic critical limb ischemia. Michael G. McCoy, Anurag Jamaiyar, Grasiele Sausen, et al. Angiogenesis, Volume 26, Pages 107–127 (2023)
3. Deacetyl epoxyazadiradione ameliorates BPA-induced neurotoxicity by mitigating ROS and inflammatory markers in N9 cells and zebrafish larvae. Raghul Murugan, B. Haridevamuthu, Rajendran Saravana Kumar, et al. Comparative Biochemistry and Physiology Part C: Toxicology & Pharmacology, Volume 271, September 2023, 109692
4. Cell shape characteristics of human skeletal muscle cells as a predictor of myogenic competency: A new paradigm towards precision cell therapy. Charlotte Desprez, Davide Danovi, Richard M Day, et al. Journal of Tissue Engineering, March 16, 2023, https://doi.org/10.1177/2041731422113979
5. An In Vitro Study of the Healing Potential of Black Mulberry (Morus nigra L.) Extract in a Liposomal Formulation. Adriana Ramona Memete, Florina Miere (Groza) 2, Vasile Laslo, et al. Applied Sciences, 2023, 13(2), 1041, https://doi.org/10.3390/app13021041
6. Osteogenesis and osteoclastogenesis on a chip: Engineering a self-assembling 3D coculture. M.A.M. Vis, F. Zhao, E.S.R. Bodelier, et al. Bone, Volume 173, August 2023, 116812
7. Printing channels with millimeter-scale curvature and deciphering their effect on the proliferation, morphology, orientation, and migration of M-22 cells. Huinan Lai, Yuye Huang, Jun Yin, Jin Qian. Int J Bioprint. 2023; 9(3): 681
8. Highly Pluripotent Adipose-Derived Stem Cell–Enriched Nanofat: A Novel Translational System in Stem Cell Therapy. Lindsey Alejandra Quintero Sierra, Reetuparna Biswas, Francesco De Francesco, et al. Cell Transplantation, May 27, 2023, https://doi.org/10.1177/09636897231175968
9. Toxicity evaluation of Pinus radiata D.Don bark wax for potential cosmetic application. Daniel Sandoval-Rivas, Daniela V. Morales, Matías I. Hepp. Food and Chemical Toxicology, Volume 178, August 2023, 113896
10. Chitin-Glucan Complex Hydrogels: Physical-Chemical Characterization, Stability, In Vitro Drug Permeation, and Biological Assessment in Primary Cells. Diana Araújo, Thomas Rodrigues, Catarina Roma-Rodrigues, et al. Polymers, 2023, 15(4), 791, https://doi.org/10.3390/polym15040791


 

 

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